Ендоскопія черепах
Мельников А. В. Ветеринарний лікар, ЗАТ "АСОМЕД"
Кулясова О. В. Ветеринарний лікар. Гор. віт. лабораторія об`єднання "Ветеринарії" г. Москви.
Ветеринарна ендоскопія у рептилій зараз дозволяє вирішувати дуже багато завдань з дослідження та лікування тварин про це говорять численні публікації зарубіжних видань таких авторів, як Bernard Schildger (Switzerland).
Техніка цілком вивчена. Інтерпретація результатів не вимагає багаторічного досвіду та хорошого знання анатомії. Під час ендоскопічної процедури внутрішні органи видно в натуральну величину, форму, місце розташування та колір. При ендоскопічному дослідженні легко діагностувати поверхневі альтерації і навіть дуже малі структури (менше ніж 1 мм у розмірі), такі як молоді яєчники або туберкульозні горбики у маленьких рептилій (менше ніж 20 г ваги). Сучасне ендоскопічне обладнання дозволяє взяти стерильно органи на біопсію для подальшої мікробіологічної чи гістологічної діагностики, а також можна витягувати сторонні тіла та паразитів. Ендоскопічне обладнання дешевше ніж інші використовувані діагностичні методи дослідження. Використовуючи одну базову одиницю обладнання, наприклад, 2,7 мм 30° жорстку ендоскопію фірми Karl Storz GmbH & Co KG (Німеччина), хірург може досліджувати рептилій вагою від 50 грам до 20 кг.
Ендоскопія є дуже цінним діагностичним прийомом для рептилій. до. такі методи, які застосовують для ссавців (вимірювання температури, дихання, серцевих ударів, пальпація лімфовузлів) не становлять для рептилій діагностичної цінності.
Ендоскопічне дослідження грудобрюшної порожнини (плевроперитоніальний простір) у рептилій була описана вперше для Chelodina mydas Wood c з авт. (1983). Ендоскопія внутрішніх органів незабаром розвинулася в метод клінічної діагностики для уявлення про внутрішні органи, такі як: печінка, нирки.
Без інвазіальної ендоскопічної процедури у рептилій було опубліковано. У 1982 році Coppoolse першим описав дослідження клоаки у рептилій. Cooper and Schildger (1991) описали оезофагоскопію у черепах.
Гастроскопічна техніка у черепах була специфікована Schildger (1997).
Анатомія внутрішніх органів черепах не створює серйозних проблем для ендоскопічного дослідження. У черепах легені фіксуються дорсально. Вони поділяються вентрально з інших внутрішніх органів горизонтальною перегородкою (septum horizontale). Перегородка напівпрозора. Це дає можливість ендоскопічно виявляти легені через перегородку. Більш-менш нерозділена плевро-перитоніальна порожнина у більшості ігуан та черепах дозволяє ендоскопічно визначити гонади, нирки, сечовий міхур, печінку, селезінку, кишечник та легені використовують єдиний підхід.
Застосування ендоскопії у рептилій доцільний у таких випадках:
- Визначення статі у мономорфних рептилій та молодих особин.
- Вивчення та контроль репродуктивного статусу, особливо актуальне для вимираючих видів.
- Діагностика внутрішніх органів (тромбоутворення, абсцеси, пухлини, асцити, туберкульоз, атеросклероз, протозоози).
- Вилучення сторонніх тіл або паразитів
- Ендоскопічна хірургія (стерилізація, кастрація, спленектомія).
Ендоскопічне дослідження плевроперитонтального простору у рептилій передбачає використання анатезії. Раніше це була велика перешкода в ендоскопії рептилій. Із сучасними анестетиками таким як ізофлуран ризик зведений до мінімуму. Рекомендовані режими анестезії черепах для ендоскопічних процедур: передопераційний прогрів тварин 25-35°С (ектотермні) Введення: кетамін для 50 мг/кг ваги у молодих черепах та 75 мг/кг ваги у дорослих черепах.
Період пробудження: температура зовнішнього середовища 20-22 ° С, вентиляція кімнатним повітрям.
У більшості черепах дози кетаміну вистачає для короткого ендоскопічного дослідження (10-15 хв.). Доза кетаміну може змінюватися для деяких видів черепах.
Ендоскопічні дослідження плевроперитоніальної порожнини.
У більшості черепах з коротким кишечником та швидким часом виведення не годують 3-7 днів. Анестезовану тварину поміщають у латеральне положення та фіксують (руками або прив`язують). Район для введення ендоскопа очищають, дезінфікують та протирають використовуючи чисту стерильну тканину (серветку). Шкіру слід висікти, використовуючи ножиці. М`язи та перитонеальну серозну оболонку перфорують прямо використовуючи ножиці, пінцет або трокар. У тих випадках коли ендоскоп використовується без оболонки (включаючи робочий канал або Verres канюлі вдування), це має бути представлено між гладкими сторонами пінцету. Вибір точки входу черепах залежить від досліджуваного органу.
Подача вуглекислого газу або фільтрованого повітря в досліджувану порожнину покращує оптичні умови, особливо у маленьких рептилій (менше 100 гр ваги). За допомогою тиску газу, що подається, можна переміщати досліджувані органи.
Для ендоскопічної хірургії продування значно збільшує операційний простір. Тиск становить 10 мм рт. ст. Для цього краще використовувати автоматичний насос, але можна використовувати і ручний. Для продування порожнини тіла використовується оболонка, що включає клапани або ендоскоп з робочим каналом і клапаном.
Ендоскопи, що використовуються для ендоскопії плевралоної порожнини, повинні бути жорсткими. Діаметр завжди є компромісом між отвором досліджуваного та максимумом оптичного огляду у пацієнта. Використовуваний діаметр залежить від розміру рептилії, яка піддасться дослідженню. 2,7 мм ендоскоп з оболонкою, що включає робочий канал, хороший компроміс для обстеження рептилій від 50 грам до 20 кг ваги. Для дуже маленьких рептилій рекомендується 1,9 мм ендоскоп з оболонкою або 3 мм трикутний ендоскоп, що включає робочий канал. Для рептилій більш ніж 500 грам ваги найкраще використовувати 4 мм ендоскоп з оболонкою він створює гарний оптичний дозвіл навіть для фото та відеозйомки. Ендоскопи з кутом повороту лінз (20°-30°) краще. Вони дозволяють розглянути орган з усіх боків.
Ендоскопічне дослідження трахеї, стравоходу та шлунка роблять на дрібних та середнього розміру (5 кг ваги) рептиліях використовуючи жорсткий ендоскоп. Щоб досліджувати великих тварин застосовують фіксуючий ендоскоп, наприклад 5 мм завширшки і 55 см завдовжки (модель 600001 VB). При дослідженні трахеї, легенів, стравоходу чи шлунка у черепах застосовується анестезія. Пацієнтів поміщають у дорсальне або вентральне положення. Голову та шию слід фіксувати. Рот, особливо у випадках, коли використовується прикріплена ендоскопія, слід фіксувати відкритим.
У разі езофагоскопії або гастроскопії ендоскоп слід просувати повільно та обережно. Вдування дозволяє розглянути стравохід. Якщо вибір жорсткого ендоскопа для процедури коротень для довгої черепахи, то треба застосувати латеральний через стравохідний доступ з правого боку шиї.
Ендоскопічне дослідження плевроперитонеального простору починається з краніальних аспектів кишечника, серця, легенів, печінки, селезінки, серозних поверхонь аорти. Наслідуючи каудально по аорті далі кишечник, гонади, нирки та сечовий міхур досліджуються. Повертаючи ендоскоп вентрально апокраніально стають видні кишечник та печінка. Поки витягуємо ендоскоп, можна оглянути жирові тіла. Цей порядок дослідження дозволяє хірургу зробити огляд найважливіших структур.
Після процедури ендоскоп витягають, вуглекислий газ слід відкачати якнайбільше з порожнини тіла і в плевроперитоніальний простір вводять антибіотик. Брюшину, м`язи та шкіру зшивають одинарною або подвійною ниткою U-подібним швом. За пацієнтом спостерігають доки він не зробив перший рух.
Список літератури.
1. Cooper JE, Schildger BJ: Exotic animals. In: Brearley, M.J., J.E. Cooper, M. Sullivan (ed.) Coloured atlas of small animal endoscopy. Wolfe Publishing, London,93-107,1991.
2. Coppoolse До: Endoscopy of cloaca of the turtle. Voorjaarsdagen, Proceedings, Rai-Congresscentre Amsterdam. No. 14, 60-63, 1982.
3. Wood CR, Wood FE, Chrichtley KH, Wildt DE, Bush M: Laparoscopy of green turtle, Chelonia mydas. Brit. J. Herpetol. 6, 323-327, 1983.
4. Schildger BJ: Zur Technik der Gastroskopie bei Schildkroten. Verh. ber. Erkrg. Zootiere, 38, 73-75, 1997.
