Досвід ендоскопічних маніпуляцій у іхтіопатології
Мельников А. В. Ветеринарний лікар, Інститут вищої нервової діяльності та нейрофізіології РАН.
Кулясова О. В. Ветеринарний лікар-іхтіопатолог. Гор. віт. лабораторія об`єднання "Ветеринарії" г. Москви.
Смирнов Н. М. Ветеринарний лікар-іхтіопатолог, зав. відд. діагностики хвороб риб, Гор. віт. Лабораторія об`єднання "Ветеринарії" г. Москви.
Як відомо, традиційно, у вітчизняній іхтіопатології для обстеження та постановки диференційованого діагнозу використовують метод повного розкриття та обстеження риб. Проте, нерідкі випадки, коли умертвіння риби для встановлення діагнозу не доцільно. Це стосується виробників або риб рідкісних та цінних порід. Методи прижиттєвої діагностики хвороб риб у Росії розроблені недостатньо та практично не описані у вітчизняній літературі [1,5,6,7,8]. Ми вирішили зробити посильний внесок у вирішення цієї проблеми. У цьому нам допомогло Московське представництво німецької фірми Karl Storz (Карл Шторц), яке люб`язно надало спеціалізоване ендоскопічне обродження, за допомогою якого було проведено прижиттєву діагностику риб. Слід зазначити, що ендоскопічні дослідження тварин, птахів та риб застосовуються не одне десятиліття в країнах Європи та Північної Америки [10,11,12], також у зарубіжній ветеринарії все ширше впроваджуються методи мало інвазивної хірургії.
Нами було проведено дослідження акваріумних риб ендоскопічним методом на базі відділу діагностики хвороб риб "Ветеринарії" г. Москви. Діагностичне дослідження проводилося за допомогою 4 мм ендоскопу відеосистеми фірми Karl Storz (Німеччина) (рис.1). Для проведення діагностичних процедур було обрано три екземпляри акваріумних риб: дискус (Symphysodon discus) (Рис.2), золота рибка (Carassius auratus auratus): варіація "Червона Шапочка" та варіація "левиноголівка" - по одному примірнику.
Показниками до ендоскопічного втручання стали такі причини:
1. Підозра на наявність зябрових паразитів у "червоної шапочки".
2. Порушення координації рухів у "левиноголівки" послужило показанням для лапароскопічного обстеження.
3. Наявність у ротовій порожнині стороннього тіла у "левиноголівки", оскільки риби містилися в акваріумі зі штучними рослинами.
4. Відмова власників від повного іхтіопатологічного дослідження з підкриттям внаслідок високої вартості риб.
Анастезія.
Якісне проведення ендоскопічних маніпуляцій можливе лише при фіксації пацієнта, або коли це неможливо, хоча б частковому знерухомленні. Також ці маніпуляції неможливо проводити у воді, а вилучення хворої риби з водного середовища є додатковим стресовим фактором. Для знерухомлення та зменшення стресу ми застосували анестезію.
Анастезію проводили 2%-ним розчином новокаїну, з розрахунку 1 ампула (5 мл) на 1.5 л води. Попередньо розчиняли необхідну кількість новокаїну 250 мл води. Новокаїн додавали у воду дробово, розділивши матковий розчин на три порції, і підливали розчин у воду з інтервалом між першою та другою порцією 30 хвилин, між другою та третьою - 20 хвилин. Вважаємо за доцільне першу порцію наркозу брати не 1/3 маткового розчину, а 1/2 його частину, тому що спостерігали досить сильну стадію збудження (риби билися об стінки акваріума і намагалися з нього вистрибнути). Водночас у інших риб, що отримали ? частина маткового розчину анастетикастадія збудження проходила спокійніше [2,3,4,9]. Оскільки ендоскопічне втручання проводиться поза водним середовищем, додатково розчиняли 1 ампулу (5 мл) 2%-ного новокаїну в 750 мл води для змочування очей, зябер і шкірних покривів під час маніпуляцій. Зручніше користуватися ємністю із встановленим на ній розпилювачем.
Техніка ендоскопії.
Ендоскопічний огляд починали з зябер. Доступ телескопа в зяброве простір здійснювали піднявши і фіксуючи зяброву кришку пінцетом. Під контролем зору було взято біопсію зі змінених структур для подальшого мікроскопування (рис.5). Після цього оглядали ротову порожнину (рис.3) і частина зябер видимих через ротову порожнину. У "левиноголівки", була видалена з ротової порожнини сторонній предмет.
Отвір для доступу в черевну порожнину робили між анальним отвором і анальним плавником дещо дорсальніше вентральної середньої лінії. Діаметр отвору 5 мм. Телескоп вводили в черевну порожнину і просували вздовж черевної стінки дорсально до хребта. Під час обстеження було чітко видно петлі кишечника (рис.4), при їх зміщенні край печінки, але все ж таки 4 мм оптика не дозволила оглянути докладно черевну порожнину. При зашиванні отвору була використана атравматична голка та шовк № 3. Час огляду однієї особини склав 10-15 хвилин. Після процедури риби поміщалися у воду з анестетиком.
Висновки.
1. Спираючись на наш досвід та літературні дані, автори рекомендують застосовувати ендоскопію в наступних випадках:
- ідентифікація статі у мономорфологічних видів-
- виявлення та збір діагностичних зразків не вдаючись до патологоанатомічного розтину риби-
- видалення сторонніх тіл-
- для виявлення областей "зовнішньої анатомії", які не можуть бути доступні іншим способом, такі як райони навколо зябер та ротова порожнина.
2. Треба відзначити, що оптика 4 мм була все ж таки не оптимальним варіантом обстеження таких мініатюрних пацієнтів (вага менше 100 грам). Автори рекомендують оптику та інструментарій діаметром 1,9 мм.
Література.
1. Колів Г. І., Дідів До. А., Іванян А. А., Мельников А. В. Досвід діагностичної лапароскопії кролика. Матеріали Дев`ятого московського міжнародного ветеринарного конгресу. Москва. 2001. З 55-56.
2. Кулясова О. В., Мельников А. В., Смирнов Н. М. Ендоскопія риб. Ж. Ветеринарна практика № 3 (10). Санкт-Петербург. 2000. З. 35-39.
3. Кулясова О. В., Мельников А. В., Смирнов Н. М. Деякі методи анестезії в іхтіології. // Ветеринарна газета №22 (191). Москва. 2000. З. 6.
4. Кулясова О. В., Мельников А. В., Смирнов Н. М. Анестезія риб. Ж. Ветеринар № 1 (21). Москва. 2001. З. 25.
5. Мельников А. В., Кулясова О. В., Смирнов Н. М. Застосування ендоскопії в іхтіології. // Ветеринарна газета № 23 (192). Москва. 2000. З. 4.
6. Мельников А. В., Кулясова О. В. Ендоскопія черепах. Ж. Ветеринарна практика № 3 (10). Санкт-Петербург. 2000. З. 39-42.
7. Мельников А. В., Кулясова О. В. Ендоскопія плевроперитоніальної порожнини у рептилій. Ж. Ветеринарія №4. Москва. 2001. З. 50-51.
8. Собещанська М. Про. Методичні засади лапароскопії у собак. Матеріали Дев`ятого московського міжнародного ветеринарного конгресу. Москва. 2001. З 56-57.
9. Шереметьєв І., Бірзул Л.Риба під наркозомРибовництво та Рибальство 1/1983.
10. Stoskopf MK. Surgery. In: Stoskopf MK (ed). Fish Medicine. Philadelphia, PA: WB Saunders Co, 1993: 91-97
11. Moccia RD, Wilkie EJ, Munkittrick KR, Thompson WD. Використовуючи добрий яблуневий fibre endoscopy в рибу для вживання віртуальних органів, з особливими посиланнями на ovarian evaluation. Aquaculture 1984-40: 255-259.
12. OrtenburgerAI, Jansen ME, Whyte SK. Nosurgical videolaparoscopy для визначення репродуктивного status of Arctic charr. Can Vet J1996-37: 96-100.
Рис.1. Проведення ендоскопічного дослідження риби за допомогою оптики та відеосистеми виробництва фірми Karl Storz.
Рис.2. Дискус (Symphysodon discus).
Рис.3. Дослідження ротової порожнини риби.
Рис.4. Відеозображення кишечника риби при лапароскопуванні.
Рис.5. Зяброві пелюстки при мікроскопуванні.
